1999. Revista Chapingo
Serie Horticultura 5: 255-259.
ACCIÓN DE
LA SOLARIZACIÓN Y DE LA MATERIA ORGÁNICA EN EL CONTROL DE LA TRISTEZA Phytophthora
cinnamomi Rands DEL AGUACATE Persea americana L.
J. A. Vidales-Fernández; J. J.
Alcantar-Rocillo
1INIFAP,CIRPAC,Campo Experimental Uruapan,
Avenida Latino Americana No 1101, Colonia Revolución C.P.60150, Uruapan,
Michoacán, México, Teléfono 01452 37392, FAX 01452 44095,
e.mail:cefap@ulter.net
RESUMEN
La tristeza es la enfermedad más importante del aguacate
en el mundo. En Michoacán, actualmente la enfermedad se encuentra distribuida
en toda las zonas aguacateras, afectando el 5% de la superficie . Los objetivos
fueron cuantificar el efecto de la solarización, descope, estiércol, paja de
alfalfa y fungicida en la infección de raíces por P. cinnamomi así como el
efecto sobre la población de hongos saprófitos, actinomicetes y bacterias
saprófitas del suelo, en el control de la tristeza del aguacate. Las hipótesis
fueron: Con la realización de descope,
solarización y la aplicación de materia orgánica disminuirá en 90% la infección
del hongo en las raíces de aguacate, en la población de P. cinnamomi en
el suelo y se incrementará la población
de hongos saprófitos, actinomicetos y
bacterias saprófitas en el suelo. El trabajo se efectúo en una huerta de
aguacate de la región de Uruapan, Michoacán. Se utilizó un diseño experimental
completamente al azar con 10 tratamientos y seis repeticiones. La unidad experimental fue un árbol. Se encontró
que la población de hongos saprófitos en el suelo se incrementa al aplicar
estiércol de bovino y paja de alfalfa. Por medio de la solarización se
registraron temperaturas letales de 42 ºC a P.cinnamomi
a 20 cm de profundidad . Los mejores tratamientos que controlan la tristeza del
aguacate son: descope, solarización (60
días), estiércol, paja de alfalfa; Phosetyl-Al inyección al tronco, descope,
solarización (60 días), estiércol de bovino, paja de alfalfa.
PALABRAS CLAVE: Aguacatero, enfermedad, hongo, flora microbiana.
THE ACTION OF SOLARIZATION AND
ORGANIC MATTER ON THE CONTROL OF AVOCADO (Persea americana Mill.)
ROOT-ROT (Phytophthora cinnamomi Rands.)
SUMMMARY
The root-rot of the avocado is
the most important disease of the world. In Michoacan over 350 thousand trees
The aims of this study were: To quantify the effect of solarization, pruning,
manure, chopped alfalfa and fungicide in the infection of Phytophthora
cinnamomi in avocado roots; to understand the effect of solarization, of
top tree prune of manure and chopped alfalfa in the population of fungi
actinomicetes and bacteria of the soil; to determinate the combined effect of
the soil solarization using plastic mulch, plus the fungicide Alliete, top tree
pruning and organic matter in the control of avocado root-rot. 10 treatments
under an experimental design (completely random), with six replications were
evaluated. Results indicated that the population of fungi and bacteria of the
soil in trees affected root-rot. A regression model: y=38.57+2.23 (fungi
population); r2=0.75, were y=grade of recuperation of the trees. The
best treatment that reduce avocado root-rot damage are the treatment with to
tree pruning, solarization, manure, and chopped alfalfa, as well treatment with
Phosetyl-Al injection to the trunk, top tree pruning, 60 days solarization
manure and chopped alfalfa.
KEY WORDS: Disease, fungi, microbiotic flora
INTRODUCCIÓN
El cultivo del aguacate es de gran importancia en México, ya
que se considera como el principal productor en el mundo. La superficie cultivada es de 124, 929 ha,
con una producción estimada de 1,100,000 toneladas. Michoacán, es el principal
estado productor con una superficie de 95 mil ha y una producción de 871,883
toneladas.
Las enfermedades del aguacate afectan la producción en 14% y
reducen la calidad de la fruta en 10%, lo que las hacen que ocupen un renglón
importante por su número, intensidad de daños y como un factor que incrementan
los costos de producción en 23%.
De las enfermedades, la tristeza es la más importante del
aguacate en el mundo y ésta es causada por el hongo Phytophthora cinnamomi que es uno de los patógenos más destructivos
que puede ocasionar la muerte de los árboles. La enfermedad fue descrita en
1922 por Rands en árboles de canela, y detectada en el aguacatero por primera
vez en Estados Unidos, por Tucker en 1929. El hongo presenta un rango de
hospedantes sumamente amplio, ya que es capaz de afectar a más de 900 especies
de plantas, lo que se considera como un
peligro potencial no sólo para el aguacatero sino para múltiples cultivos de
importancia económica Zentmyer (1980).
En California existen 1300 ha afectadas. En Sudáfrica se
estima con daños el 20% del arbolado de aguacate. En México se encontró por primera vez en 1951 (Zentmyer, 1951). Actualmente se encuentra presente en los
estados de Puebla, Chiapas, Veracruz, Nayarit, Morelos y Michoacán (Morales,
1990).
En Puebla, se han observado niveles de incidencia del 75% de
los árboles. En Querétaro ocasionó la desaparición del cultivo (Téliz y García,
1982).
En Michoacán, apareció en la década de los setentas de tal
manera que en 1979 se encontraron 13 mil árboles dañados en suelos pobres en
materia orgánica. En 1994 se efectuó un muestreo y se encontró la enfermedad
distribuida en suelos del tipo andosol afectando a 100 mil árboles en los
municipios de Uruapan, San Juan Nuevo, Tingüindín, Los Reyes, Tancítaro,
Peribán y Ziracuaretiro. Lo que provocó pérdidas a los productores de aguacate
de 640 millones de pesos, tomando como base la estimación que hace FIRA 1996 de
640 pesos por árbol de 8 años de edad (Vidales, 1996).
Los objetivos del trabajo de investigación fueron:
cuantificar el efecto de la solarización, poda, estiércol de bovino, paja de
alfalfa y fungicida en la infección de raíces de aguacatero por Phytophthora cinnamomi ; conocer su
efecto en la población de hongos saprófitos, actinomycetos y bacterias
saprófitas del suelo; determinar el efecto combinado de la desinfección solar
del suelo mediante el uso de plástico (solarización) con el fungicida Alliete,
podas y materia orgánica; demostrar la actividad de la microflora del suelo por
medio de la formación de dióxido de carbono y amonio en los diferentes
tratamientos.
MATERIALES Y
MÉTODOS
Se realizaron recorridos de campo para verificar la
presencia de la enfermedad, efectuando un muestreo dirigido a los árboles que
manifestaban síntomas de la tristeza y colectando raíces enfermas.
Aislamiento del hongo en el laboratorio
Las raíces colectadas se lavaron con agua destilada y con un
bisturí se cortaron porciones de las mismas, tomando un poco de tejido
necrótico. El material seleccionado se desinfectó en una solución de
hipoclorito de sodio al 1% durante un minuto. Posteriormente, los trocitos de
raíz, se enjuagaron con agua destilada estéril y se secaron cuidadosamente
utilizando papel filtro; posteriormente se transfirieron a cajas de Petri
conteniendo medio de cultivo papa dextrosa agar, más ampicilina.
Trabajo de campo
Se utilizó un diseño experimental completamente al azar con
10 tratamientos y seis repeticiones. La unidad experimental fue un árbol.
Los tratamientos estuvieron
constituidos:
1.- Phosetyl Al 80%
polvo humectable, inyección al tronco.(IP)
2.- Phosetyl Al 80%
polvo humectable, inyección al tronco, descope del árbol, solarización (60
días) (IP+D+S).
3.-Descope,
solarización(60 días) (D+S).
4.- Phosetyl Al 80%
polvo humectable, inyección al tronco, estiércol de bovino , harina de alfalfa
(IP+E+A).
5.- Descope,
solarización (60 días), estiércol de bovino, harina de alfalfa(D+S+E+A).
6.-Phosetyl Al 80%
polvo humectable, inyección al tronco, descope, solarización (60 días),
estiércol de bovino, harina de alfalfa (IP+D+S+E+A).
7.- Phosetyl Al 80%
polvo humectable, aplicación foliar, estiércol de bovino, harina de alfalfa
(PF+E+A).
8.- Descope (D).
9.- Descope,
solarización, corteza de pino (D+S+CP).
10.- Testigo absoluto
(T).
Las aplicaciones foliares de Phosetyl-Al 80% polvo humectable se efectuaron cada tres
meses, a una concentración de 3 g de producto comercial por litro de agua.
Las inyecciones al tronco de Phosetyl - Al 80% polvo humectable fueron de 3.6 de ingrediente activo por árbol, según la
metodología de Darvas et al. (1984) de la forma siguiente:
a).- Disolver 1 kg de
Phosetyl- Al 80% polvo humectable en 10 litros de agua.
b).- Agitar vigorosamente por 30 minutos.
c).- Dejar reposar la solución por 7 días.
d).- Inyectar al
tronco en el mes de marzo y a fines del mes de mayo. En cada uno de los meses
citados aplicar tres inyecciones por árbol en los diferentes puntos cardinales,
a una dosis de 15 ml por inyección.
El método de inyección fue:
a).- Alrededor del tronco y a 50 cm arriba del nivel del
suelo, se hicieron 3 perforaciones de 5 milímetros de diámetro y 4 centímetros
de profundidad en un ángulo de 15 grados sobre un plano horizontal.
b).- Para realizar la inyección se utilizan jeringas para
ganado bovino de orificio de salida excéntrico. Se toman 15 ml de solución por
jeringa y se mueve el embolo hasta la
marca de 50 ml. Se colocó el ducto de salida en el orificio del tronco y se
incrustó completamente. Se empujo el embolo a la marca de 25 ml y se fijo con
un clavo que atraviese la jeringa de lado a lado por la parte superior.
c).- Una vez
consumida la solución, se retiran las jeringas y se sellan los orificios con
Arbolsan.
Variables evaluadas
Determinación de la dinámica del crecimiento de las raíces,
principalmente las alimentadoras, de cada uno de los árboles en estudio, se
tomaron 6 submuestras homogéneas de suelo y raíces a una profundidad de 10 cm,
en tres puntos equidistantes a la mitad
entre el tronco y el cajete y tres a la orilla del cajete, estas se efectuaron
cada 3 meses. Se tomaron todas las raíces contenidas en las 6 submuestras y se
guardaron y se etiquetaron en una bolsa de plástico. Las raíces de cada árbol
se pesaron en fresco y se secaron en una estufa a 70 grados centígrados durante
3 días; posteriormente se pesaron nuevamente para medir su peso seco. En cada
muestreo se determinó el peso de las raíces (fresco y seco), y el porcentaje de
raíces sanas y enfermas.
Se determinó el porcentaje de infección de Phytophthora
cinnamomi en raíces de aguacate. Por cada árbol en estudio se utilizaron 4
cajas de petri con papa dextrosa agar (PDA), más antibiótico; en cada caja se
sembraron 10 puntas de raíz y se obtuvo por caja el porcentaje de infección. El
procedimiento anterior se efectuó cada 3 meses. Las raíces se tomaron a una
profundidad de suelo de 20, 30 y 40 cm.
Se determinó las poblaciones de hongos antagónicos y
actinomicetos en el suelo. Para esto se utilizó un gramo de suelo rizoplan (sacudir raíz), en 9 ml de agua
destilada. Después se diluyó de 10-1 a 10-3, posteriormente se vaciaron
0.5 ml de dilución a cajas de petri (3 cajas por árbol), con el medio de
cultivo PDA más tergitol 0.5 ml más ampicilina 0.025 g más clorhidrato de
tetraciclina 0.050 g por litro de medio de cultivo. Las cajas se observaron a los 3 días. El trabajo citado se
efectuó cada 6 meses.
Se determinaron las poblaciones de bacterias antagónicas.
Para lo cual se utilizó un gramo de suelo rizoplano (se sacudió la raíz), en 9 ml de agua destilada. Posteriormente se diluyó de 10-1
a 10-16 para después vaciar 0.5 ml de la última dilución a cajas de petri con agar
nutritivo (3 cajas por árbol). Se contaron las colonias bacterianas a las 48
horas. El trabajo se efectuó cada 6 meses. También se determinó con una escala
de infección la enfermedad (Zentmyer, 1984):
0=árbol sano; 1= daño leve; 2= daño medio; 3= daño severo; 4= daño muy
severo; 5= árbol muerto. Utilizando la escala anterior se tomaron datos de
campo cada 3 meses.
Se tomaron datos climáticos diariamente de temperaturas del
aire (máxima, mínima), temperatura del suelo por medio de un geotermógrafo (10,
20 y 30 cm de profundidad), radiación solar, y humedad relativa por medio de un
higrotermógrafo.
RESULTADOS Y
DISCUSIÓN
Temperaturas máximas del suelo, durante el proceso de
solarización en el control de la trizteza
En la Figura 1 se presentan las temperaturas máximas del
suelo y las temperaturas letales a P.
cinnamomi durante el proceso de solarización; se observa que a 20 cm de
profundidad en el lapso comprendido del mes de marzo al 30 de junio (120 días),
la temperatura se mantuvo arriba de 34 °C y se elevó hasta 42 °C. Las
temperaturas citadas son críticas para el patógeno (Zentmyer, 1985). A 30 cm de profundidad la temperatura se elevo hasta 35 °C. El efecto de la temperatura alcanzada
durante el proceso de la solarización con plástico cristalino, se traduce en
una eliminación del inóculo del hongo en el suelo y en una rápida recuperación
de los árboles dañados. Debido a que a esa profundidad se encuentra la mayor
cantidad de raíces absorbentes menores de 5 mm de diámetro (Avilán et al., 1981; Salazar, 1984; Vidales,
1993).
Lo
anterior coincide con otros trabajos donde se mencionan se logró buen control
de las enfermedades radicales del aguacate ocasionadas por los hongos: Verticillium sp., Rocellinia necatrix,
Phytophthora cinnamomi, al efectuar
la solarización con plástico cristalino por 1.5 meses. En Israel se ha
encontrado que posteriormente de efectuar la técnica de solarización se produce
un vacío biológico en el suelo y que es necesario incorporar nuevos
microorganismos benéficos al mismo, lo anterior se logra con la incorporación
de estiércol de bovino y harina de alfalfa, así lo menciona Valenzuela (1984),
al reducir las poblaciones de P.cinnamomi.
Efecto
de la aplicación de estiércol de bovino y harina de alfalfa en la recuperación
de árboles afectados con tristeza
Como
un efecto de la aplicación del estiércol de bovino y harina de alfalfa, se
evaluó la población de hongos y bacterias benéficas del suelo en árboles
afectados con tristeza. Se encontró el modelo:
y = -38.57 + 2.23 (población de hongos benéficos); r = 0.86; r2 = 0.75
donde: y = grado de recuperación de árboles.
El coeficiente de determinación (r2) indica que
la población de hongos benéficos aplicada a través del estiércol y de la harina
de alfalfa, explica la recuperación del
árbol en 75%. El modelo anterior indica que por cada unidad que se incremente
la población de hongos benéficos en el suelo, se incrementará en 2% la
recuperación de los árboles en la escala de medida de la enfermedad de Zentmyer
(1984) (Figura 2).
En cuanto a las bacterias
se encontró el modelo y=-13.45 + 1.81 (Población de bacterias
benéficas); r = 0.69; r2 = 0.48, donde: y = Grado de recuperación de árboles
afectados con tristeza. El coeficiente de determinación indica que la población
de bacterias benéficas explica en un 48% el grado de recuperación de los
árboles afectados con tristeza, en la escala de medida de la enfermedad
propuesta por Zentmyer (1984) (Figura 3).
Lo anterior coincide con lo reportado por Nesbitt et al. (1979), quién al efectuar un
estudio sobre el efecto de la materia orgánica en la sobrevivencia de P. cinnamomi encontraron que las hifas
fueron lisadas, al incubar a éste hongo en suelos con el 50% de materia
orgánica, muchos de los esporangios producidos fueron abortivos, concluyeron
que al incrementar la materia orgánica, hay un incremento en la concentración de
nutrimentos y en las poblaciones microbianas y estos factores son la causa que
las poblaciones de P. cinnamomi
disminuyan en el suelo.
Efecto de la población de raíces infectadas con Phytophthora cinnamomi en el nivel de
daño de árboles con tristeza
Se generó el modelo y
= 190.98 - 1.79 (Porcentaje de raíces afectadas con tristeza); r =
-0.94; r2 = 0.90 donde: y =
Recuperación de árboles Este modelo
expresa que por cada uno porciento que se incremente la población de raíces
enfermas, disminuirá en un 1.7% la recuperación de árboles con tristeza (Figura
4).
Efecto de la
población de hongos y bacterias benéficas sobre la materia seca de la raíz de
árboles con tristeza
En lo referente a hongos, el modelo que se encontró fue: y =
-6.21 + 2.71(Población de hongos benéficos); r = 0.71; r2=0.50,
donde: y = Porcentaje de materia seca de la raíz
El valor del coeficiente de determinación señala en un 50%
la población de hongos benéficos explica el incremento de la materia seca de la
raíz. El modelo indica que por cada unidad que se incremente la población de
hongos benéficos en el suelo, se incrementará en 2.71% la materia seca de la
raíz (Figura 5).
En cuanto a bacterias se encontró el modelo: y = 20.35 +
2.45 (Población de bacterias benéficas); r = 0.95; r2 = 0.91 donde : y = Porcentaje de materia seca de la
raíz
El valor del coeficiente de determinación señala que la
población de bacterias benéficas en un 91% se encuentra explicando el
incremento de materia seca de la raíz, lo anterior significa que por cada
unidad que se incremente la población de bacterias benéficas en el suelo se
incrementará en 2.45% la materia seca de la raíz (Figura 6).
Detección de la
actividad microbiana del suelo en árboles con tristeza
En la Figura 7 se detecta el dióxido de carbono que producen
los microorganismos en suelos que han sido tratados con materia orgánica para
el control de las poblaciones de P.
cinnamomi. A las 24 horas de efectuar la prueba bajo condiciones de
laboratorio se encontró que el mejor tratamiento fue: Descope de árboles, solarización del suelo y aplicación al cajete
de 100 kg de corteza de pino; descope
de árboles, solarización, inyección de Phosetyl al tronco del árbol y
aplicación al cajete de 150 kg de estiércol de bovino más 100 kg de harina de alfalfa;
inyección de Phosetyl al tronco y aplicación al cajete de 150 kg de estiércol
de bovino más 100 kg de harina de alfalfa, con 0.08 g, 0.05 g y 0.05 g de
dióxido de carbono por cada 100 g de suelo respectivamente. A las 48 horas de
hacerse la prueba se encontró que el mejor tratamiento fue: Descope de árboles,
solarización, inyección de Phosetyl, estiércol y harina de alfalfa con 0.20 g
de dióxido de carbono.
Recuperación de árboles afectados con tristeza
Los mejores tratamientos que presentan mayor grado de
recuperación de árboles en campo son: Descope de árboles, solarización del
suelo y aplicación al cajete de 100 kg de corteza de pino; descope de árboles,
solarización , inyección de Phosetyl al tronco del árbol y aplicación al cajete
de 150 kg de estiércol de bovino más 100 kg de harina de alfalfa; inyección de
Phosetyl al tronco y aplicación al cajete de 150 kg de estiércol de bovino más
100 kg de harina de alfalfa; descope de árboles, inyección de Phosetyl al
tronco y solarización (Figura 8).
CONCLUSIONES
El efecto de la temperatura que se alcanza durante el
proceso de la solarización con plástico cristalino, se traduce en una reducción
de las poblaciones de Phytophthora
cinnamomi en el suelo y en una rápida recuperación de los árboles dañados.
Durante el proceso de solarización se logró alcanzar
temperaturas por encima del punto crítico (34 °C), a P. cinnamomi que reducen las poblaciones del patógeno en el suelo.
Con la aplicación de estiercol de bovino y harina de alfalfa
al suelo, se incrementa la población de hongos y bacterias benéficas
antágonicas a P. cinnamomi.
La población de hongos benéficos explican en un 50% el
incremento de la materia seca de la raíz.
Se encontró mayor cantidad de dióxido de carbono debido al
incremento de actividad microbiana en el suelo, cuando se aplica estiércol de
bovino y harina de alfalfa.
Los mejores tratamientos que controlan a la tristeza son:
Descope de árboles, solarización del suelo y aplicación al cajete de 100 kg de corteza de pino; Descope de árboles, solarización , inyección
de Phosetyl al tronco del árbol y aplicación al cajete de 150 kg de estiércol
de bovino más 100 kg de harina de alfalfa; Inyección de Phosetyl al tronco y
aplicación al cajete de 150 kg de estiércol de bovino más 100 kg de harina de
alfalfa; Descope de árboles, inyección de Phosetyl al tronco y solarización.
LITERATURA CITADA
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